Revista Multidisciplinar Epistemología de las Ciencias
Volumen 3, Número 1, 2026, enero-marzo
DOI: https://doi.org/10.71112/c9qe0m86
EVALUACIÓN DEL EFECTO COMBINADO DE MENAQUINONA 4 Y COENZIMA Q10
SOBRE LA CRIOCONSERVACIÓN DE SEMEN OVINO
COMBINED EFFECT OF MENAQUINONE 4 AND COENZYME Q10 EVALUATION
FOR THE CRYOPRESERVATION OF OVINE SEMEN
Dayana Patricia Castro Sanchez
Manuel Esteban Maldonado Cornejo
Andrés Leonardo Moscoso Piedra
Ecuador
DOI: https://doi.org/10.71112/c9qe0m86
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Evaluación del efecto combinado de menaquinona 4 y coenzima Q10 sobre la
crioconservación de semen ovino
Combined effect of menaquinone 4 and coenzyme Q10 evaluation for the
cryopreservation of ovine semen
Dayana Patricia Castro Sanchez
dayana.castro.12@est.ucacue.edu.ec
https://orcid.org/0009-0002-1430-2360
Universidad Católica de Cuenca
Ecuador
Manuel Esteban Maldonado Cornejo
mmaldonac@ucacue.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-1507-2280
Universidad Católica de Cuenca
Ecuador
Andrés Leonardo Moscoso Piedra
amoscosop@ucacue.edu.ec
https://orcid.org/0000-0002-4017-0165
Universidad Católica de Cuenca
Ecuador
RESUMEN
Esta investigación experimental analizó el impacto del uso combinado de dos antioxidantes:
menaquinona 4 y coenzima Q10 sobre la calidad del semen ovino sometido a una crio
conservación comparándolos con el efecto combinado de cada molécula junto a L-carnitina y
su uso individual. Este modelo permitió evaluar los posibles efectos Redox de las
combinaciones y su saturación en el medio producto de su alto peso molecular, para ello se
evaluó los efectos de estas 6 combinaciones sobre 8 eyaculados donde se analizó la motilidad
espermática, integridad de la membrana y la viabilidad celular mediante pruebas de Eosina-
nigrosina, Yoduro de propidio, rodamina y motilidad, mediante el sistema CASA. Los resultados
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determinaron un efecto negativo de la combinación de moléculas sobre la calidad espermática,
atribuible a la saturación y carga iónica del medio generando daños sobre la membrana
espermática, concluyendo que es recomendable el uso limitado de antioxidantes en los medios
espermáticos.
Palabras clave: L-carnitina; peso molecular; membrana espermática; efecto combinado
ABSTRACT
This experimental study analyzed the impact of the combined use of two antioxidants,
menaquinone-4 and coenzyme Q10, on the quality of ovine semen subjected to
cryopreservation, comparing them with the combined effect of each molecule together with L-
carnitine and their individual use. This model allowed the evaluation of possible redox effects of
the combinations and their saturation in the medium due to their high molecular weight. The
effects of these six combinations were assessed in eight ejaculates, analyzing sperm motility,
membrane integrity, and cell viability through eosin-nigrosin staining, propidium iodide,
rhodamine, and motility evaluation using the CASA system. The results demonstrated a
negative effect of the molecular combinations on sperm quality, attributable to medium
saturation and increased ionic load, which generated damage to the sperm membrane. It was
concluded that limited use of antioxidants in semen extenders is recommended.
Keywords: L-carnitine; molecular weight; combined effect; sperm membrane
Recibido: 1 marzo 2026 | Aceptado: 18 marzo 2026 | Publicado: 19 marzo 2026
DOI: https://doi.org/10.71112/c9qe0m86
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INTRODUCCIÓN
La crioconservación de semen ovino es una herramienta clave en los programas de
reproducción asistida, ya que permite conservar el material genético de alto valor por largos
períodos (Guiracocha-Viñanzaca et al 2025). Sin embargo, este proceso implica riesgos para la
calidad del semen debido al estrés oxidativo y otros daños celulares (Adami, et al., 2022). Para
contrarrestar estos efectos, se ha explorado el uso de antioxidantes como la menaquinona 4
(vitamina K2) y la coenzima Q10, conocidos por su capacidad para proteger las células del
daño (Uribe Valderrama, et al., 2011). Aunque ambos compuestos han mostrado beneficios
individuales, su efecto combinado aún no ha sido lo suficientemente estudiado (Reyes-
González, et al., 2022).
Este trabajo tiene como propósito evaluar si la combinación de estos dos antioxidantes
de mayor peso molecular afecta la calidad del semen ovino después de la congelación,
preservando su viabilidad, motilidad y funcionalidad en base de lo descrito por Arando et al.,
(2019) y así comparar este efecto frente a otras combinaciones y efectos individuales de cada
molécula.
METODOLOGÍA
El estudio fue realizado en la Universidad Católica de Cuenca, laboratorio de
reproducción animal de la Facultad de Ciencias Agropecuarias, Carrera de Medicina Veterinaria
que está situada en la provincia del Azuay, en el Cantón Cuenca, localizada en el kilómetro 2
1⁄2 de la Panamericana Norte. Ejecutado completamente al azar, mismo que involucró a 1
carnero de raza Kathadin de año y medio de edad para realizar la colecta de semen tres veces
por semana, llegando a un total de 8 repeticiones, aplicando a cada eyaculado el antioxidante
COQ10 y de MK-4, juntas y por separado cada una, durante los meses de enero a marzo del
2025, constó de dos fases una de campo y una de laboratorio.
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La obtención del semen fue mediante el uso de una vagina artificial, la cual se
precalentará con agua a una temperatura entre 51 y 52 °C para garantizar que al momento de
la recolección se mantenga a aproximadamente 42 °C así mismo se utilizó una hembra (como
maniquí) para inducir la eyaculación; el operador se ubicó en el flanco derecho del macho,
orientando la vagina artificial a 45° respecto al suelo. Tras la eyaculación, las muestras fueron
protegidas de la luz solar directa y mantenidas a temperatura corporal (37 °C) hasta su ingreso
al laboratorio (Lema Guamán, et al., 2025).
En el laboratorio se evaluaron las características macroscópicas del semen (color, olor,
volumen y pH), y posteriormente, se analizaron las propiedades microscópicas. Se evaluó la
Motilidad masal (MM) y motilidad individual (MI) mediante microscopía a 10x y 40x,
respectivamente. Su concentración espermática se realizó usando un fotómetro de flujo (SDM1
Minitube) específico para ovinos. Y posterior a ello procedimos a una Evaluación funcional y
estructural respetivamente mediante pruebas de eosina-nigrosina (Minitube), yoduro de
propidio (Sigma Aldrich), prueba de integridad funcional de la membrana (HOST), rodamina
(Sigma Aldrich) y sistema CASA (Computer-Assisted Sperm Analysis) para parámetros
cinéticos (Watson PF, 2000). Utilizando la siguiente fórmula:
Fórmula de dilución
Total, Espermatozoides vivos= Volm. Eyaculado x Concentración x Motilidad Masal x
Motilidad Individual
Total, Pajuela= T. Espermatozoides vivos / Concentración deseada
Volm. Final= Total Pajuela / 2-4 (ml de la pajilla)
Volm. Dilución= Volm. Final - Volumen del semen - Volumen de la Predilución
Triladyl = 3:1:1 (3 de agua ultra pura, 1 de yema de huevo, 1 de Triladyl)
Las muestras fueron analizadas mediante el sistema CASA (Computer-Assisted Sperm
Analysis) observando diversos parámetros espermáticos entre estos, los espermatozoides
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progresivos (PR), no progresivos (NP), inmóviles (IM), velocidad curvilínea (VCL), velocidad
media (VAP), velocidad lineal (VSL), índice de rectitud (STR), índice de linealidad (LIN),
amplitud lateral de la cabeza (BCF) y frecuencia de batida (BCF) (Lema Guamán et al, 2025).
Se coloco en un portaobjeto 3 μL de Eosina-Nigrosina junto con 3 μL de la muestra
espermática, luego con ayuda de otro portaobjeto se mezcló suavemente y se realizó un
barrido hacia el otro extremo de la placa dejando reposar aproximadamente 2 min (Farfán et al,
2025). Para la observación de la muestra en el microscopio con el lente de 40x, observando
distintos campos de la muestra hasta llegar a contar 100 espermatozoides tanto vivos como
muertos, de esta manera se determinará el porcentaje de vitalidad (Iliceto, et al., 2024).
Con ayuda de un tubo Eppendorf de 1,5 ml se colocó 3 μL de Yoduro de Propidio junto a
5 μL de la muestra seminal dejándola reposar durante 15 minutos en la platina térmica a 37 °C,
para luego llevar la muestra fuera del alcance de la luz, realizar el respectivo frotis y evaluación,
esta muestra se observó con ayuda de un microscopio de fluorescencia, con lente de 40x y con
el filtro número 1, de esta manera recolectando datos de 100 espermatozoides de diferentes
campos entre teñidos que representan un color rojo fosforescente (muertos) y no pintados
(vivos) con el ADN intacto vitalidad (Reza, et al., 2021).
En la Prueba de Host (Integridad funcional de la membrana), se tomó 100 μL de la
solución de Host acompañada de 20 μL de la muestra en un tubo Eppendorf para
homogeneizar y dejar reposar en la platina térmica baño María a 37 °C, durante 45 minutos. Al
pasar el mencionado tiempo se procedió a evaluar la muestra colocando 5 μL sobre un
portaobjetos y realizar el frotis para valorar la muestra en el microscopio (Olympus BX51) con el
lente de 40x llegando analizar 100 espermatozoides en total, los cuales mostraran ser positivos
(enrollando la cola e hinchando la cabeza) y negativos (sin reacción) a la solución de Host es
decir a la funcionalidad de la membrana plasmática vitalidad (Sadler, et al., 2024).
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Por otro lado, en la prueba de rodamina donde se observa la integridad y potencial de la
membrana mitocondrial, tinción donde se analizó en los espermatozoides teñidos de color
verde fosforescente indicaran una buena funcionalidad vitalidad (Guamarrigra-Sanchez, et al.,
2025). Para ello se utilizó 1 μL de Rodamina en 50 μL de la muestra, en un reposo de 37 °C por
un periodo de 15 minutos, se colocó una gota de 5 μL en el portaobjeto y realizar el frotis para
evaluar en un microscopio de fluorescencia (Olympus Bx51) con filtro 3. Finalmente se siguió el
mismo procedimiento para la base de conteo vitalidad (Luana, et al., 2022).
RESULTADOS
Luego de un análisis donde realizamos la comparación entre tratamientos en el cual se
destacó diferencias estadísticas y significativas en los parámetros espermáticos (Tabla 1)
(Aitken, & Drevet., 2020). Iniciando con el parámetro de la prueba Test Host, donde se observó
diferencias asombrosas entre tratamientos (p = 0.005). Para el tratamiento de Q10+MK4 reflejo
el valor promedio más alto (21.1 ± 9.89), siendo superior a MK4+ L-Carnitina (15.9 ± 3.92) y por
último lugar a MK-4 + L-carnitina con (13.3 ± 5.58), Reflejando el efecto positivo con el
tratamiento combinado de Q10+MK4 sobre su integridad funcional de su membrana
espermática (Kowalczyk, 2022).
Es importante destacar que no se detectaron alguna diferencia significativa con Eosina
Nigrosina (p = 0.967), por lo cual los tratamientos no influyeron en la viabilidad celular que
determina esta prueba.
En la actividad mitocondrial con Rodamida, no obtuvimos una diferencia significativa (p =
0.170), sin embargo, se registró una tendencia con valores superiores en la combinación de los
tratamientos con respecto a el control integridad y potencial de la membrana mitocondrial
(Puerta, et al., 2024).
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En la variable Motilidad progresiva, existe diferencias estadísticamente significativas (p =
0.048). Con el tratamiento de L-Carnitina+Q10 revelo que es el mayor valor promedio (30.7 ±
22.3), continuando con MK4 + L-carnitina (17.0 ± 10.9), y donde Q10+MK4 fue inferior a los dos
valores mencionados con (15.7 ± 5.58). Los resultados destacan que la combinación de
LC+Q10 fue el más apto aportando de manera positiva con la motilidad progresiva del
espermatozoide (Vicente-Fiel, et al., 2014).
En el patrón de Movimiento Lineal (LIN), hay diferencias con (p = 0.023). Tratamiento
que alcanzo el valor promedio superior fue L-Carnitina (37.2 ± 8.07), el valor intermedio fue MK-
4 + L-carnitina (32.4 ± 11.5), y el tratamiento inferior fue Q10 + MK-4 (28.8 ± 5.96) siendo el
valor más bajo de los tres, lo que significaría que L-Carnitina+ Q10 tiene superiores beneficios
con la mejora del desplazamiento espermático (Loja E, et al., 2025).
Estos resultados indican que los tratamientos combinados dieron efectos positivos, L-
Carnitina+Q10 fue predominante sobre la motilidad espermática, especialmente en los
parámetros progresividad y cinemática, en cambio el tratamiento con Q10+MK4 tiene un efecto
más marcado en la integridad de la membrana espermática (Lema Guamán, et al., 2025).
Así mismo estos resultados indican que la combinación L-carnitina+Q10 contribuye
positivamente en la motilidad espermática, en parámetros de progresividad y cinemática, en
cambio Q10+MK-4 actúa puntualmente en la integridad de la membrana. Como resultado sobre
los efectos de diferentes tratamientos que dependen de una combinación especifica como
antioxidantes y cofactores metabólicos utilizados (Bansal, et al., 2011).
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Tabla 1
Tratamientos con Antioxidantes
TRATAMIENTO
HOST
EOSINA
RODAMIDA
PROGRESIVO
LIN
Valor p
0.005
0.967
0.170
0.048
0.023
Q10 + MK-4
21.1 ±
9.89
57.1 ±
28.7
43.6 ± 18.3
15.7 ± 5.58
28.8 ±
5.96
MK-4 + L-
Carnitina
13.3 ±
5.58
53.2 ±
22.5
38.3 ± 4.19
17.0 ± 10.9
32.4 ±
11.5
LC + Q10
15.9 ±
3.92
52.7 ±
19.1
43.4 ± 11.7
30.7 ± 22.3
37.2 ±
8.07
Figura 1
Gráfico radial de los tratamientos en función de valores de Progresividad.
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Figura 2
Gráfico radial de los tratamientos en función de valores en la cinética (LIN, BCF, VAP).
Figura 3
Gráfico radial de los tratamientos en función de valores de tinciones (HOST, EOSINA,
RODAMIDA).
DISCUSIÓN
Se conoce que la utilización tratamientos combinados como antioxidantes con efectos
protectores frente al estrés oxidativo inducido por la crio conservación, han mostrado cambios
positivos en la integridad funcional de la membrana espermática, observándose en la prueba
de Host. Por ejemplo, el uso de L- Carnitina y Coenzima Q10 influye sobre la motilidad
progresiva del material genético y sus parámetros cinéticos (Mehdipour, et al., 2025), donde se
ha observado que la combinación de tratamientos ayuda con la actividad mitocondrial y su
viabilidad celular, por lo que sí existe potencial sinérgico en los protocolos de crioconservación
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seminal ovina (Filipa, et al., 2023), sin embargo, no todas las combinaciones tienen respuesta
significativa (Larbi A, et al., 2018).
Los resultados expuestos en esta investigación se han enfocado en lograr una discusión
más amplia sobre la suplementación de antioxidantes de manera combinada, donde se
demuestran que la suplementación con antioxidantes en semen debe ser controlado y si bien
se ha observado efectos positivos de la Coenzima Q10 y la Menaquinona por su naturaleza y
efecto protector en la calidad del esperma luego, de la crioconservación (Juliani & Henry,
2008), estos resultados son dependientes de la dosis y la especie donante del semen.
La combinación entre Q10 Y MK4 puede generar una necesidad biologca por párte de la
célula espermática, donde coenzima tienen acción directa sobre el nivel mitocondrial,
minimizando la producción de (ERO) y así trayendo la estabilidad en la cadena respiratoria, por
otro lado, MK4 solo en membrana plasmática ejerce efecto protector para los fosfolípidos
estructurales, minimizando la peroxidación lipídica (Chavoshi Nezhad, 2021), pero aún no se ha
demostrado que las combinaciones funcionan en aspectos directos o específicos en la
integridad de membrana, cinética y viabilidad espermática (Lema, et al., 2025), por lo que este
es el factor más relevante de este estudio, que genera bases, para los estudios combinados de
antioxidantes (Aguirre-Riofrio, et al., 2023).
Existe a su vez un factor que es necesario considerar en este tipo de investigaciones
donde los resultados en cuanto la motilidad total y progresiva de las muestras, incluyendo su
integridad en la membrana plasmática, actividad mitocondrial y su viabilidad celular (Cofre, et
al., 2018). Estas investigaciones indican la importancia del ambiente donde el animal se cría,
así como las razas sobre la calidad espermática.
La evidencia científica indica que el estrés oxidativo es el mecanismo principal y
responsable de cualquier daño estructural y funcional de los espermatozoides en los cambios
de temperatura de la refrigeración y congelación de la muestra seminal (Loja, 2025). Donde la
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2272 Revista Multidisciplinar Epistemología de las Ciencias | Vol. 3, Núm. 1, 2026, enero-marzo
misma autora demuestra en su estudio que la crioconservación produce alteraciones que
tienen que ver con la fluidez de la membrana plasmática, donde ocurre la pérdida del potencial
en su mitocondria y eleva la producción de especies reactivas de oxígeno, es decir, ocurre una
disminución pronunciante de la motilidad y viabilidad del material genético, cuando las dosis de
aditivos no son controladas y por más de estar expuestas a moléculas consideradas como
antioxidantes.
Los valores expresados en la investigación demuestran que con ausencia de agentes
antioxidantes representan los valores más bajos dentro de los parámetros funcionales
evaluados, expresando que el estrés oxidativo ocurre post-congelación (Wang, et al., 2008), sin
embargo, al sobre cargar la solución de antioxidantes se genera un efecto también
contraproducente.
Esto se ha evidenciado en estudios anteriores donde se ha observado el efecto de
microdosis de coenzima Q10 en la refrigeración seminal, con bajas concentraciones reportan
casos positivos en lo que respecta la motilidad progresiva, integridad de la membrana
plasmática y la funcionalidad mitocondrial (Rodríguez, 2024), proporcionando efectos estables
es una cadena respiratoria mitocondrial normalmente en función, lo cual lleva a producir
intracelularmente (ERO), sin embargo la respuesta de esta molécula se ve limitada durante la
crio conservación (Guamarrigra-Sanchez, et al.,2024), basados en que la coenzima Q10 tiene
respuestas positivas cuando se trabaja directamente bajo los parámetros bioenergéticas
espermáticos (Abecia, etal., 2020). La utilización de microdosis de antioxidantes en semen
ovino demuestra ya sus efectos positivos trabajando de manera individual, pero cuando los
tratamientos son combinados estos no funcionaron en igual medida (Lema, et al., 2024).
Por otro lado, tenemos a la menaquinona-4 que fue evaluada bajo un efecto combinado
de la menaquinona-4, y donde algunas combinaciones de estos antioxidantes resultaron más
favorables que otras, bajo el efecto protector en la membrana plasmática, la cual no permite la
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peroxidación lipídica (Gautier y Aurich, 2022). Una vez más se repite lo anteriormente citado,
donde los efectos combinados no son lo suficientemente significativos.
Es por esto que la hipótesis del sinergismo de antioxidantes, no solo se debe
fundamentar en la suma de los efectos antioxidantes, sino en factores bioquímicos más
profundos.
Por último, para poder evaluar plenamente los efectos sinérgicos es necesario evaluar
también la metodología, donde los diluyentes bufferados como el glicerol o el DMA son
reguladores osmóticos, que pueden alterar la funcionalidad de la membrana (Guiracocha-
Viñanzaca, et al., 2025).
En efecto, a este punto de la investigación, la hipótesis del sinergismo de las
combinaciones de antioxidantes bajo un esquema combinado y en concentraciones controladas
(Valdez-Pinargote, et al, 2024), todavía requiere mayor profundidad ya que estos antioxidantes
pueden ser agentes promisorios para la mejora de ciertos protocolos reproductivos que sean
avanzados y actualizados para lograr la conservación genética del material espermático y
ayudando a futuras ideas de bancos de germoplasma animal, un avance en la reproducción
animal (Nogueira, et al., 2022).
CONCLUSIONES
Los estudios sobre sinergismo molecular deben enfocarse en la bioquímica y función
celular de cada molécula para poder determinar las dosis adecuadas, dado que sus efectos no
son aditivos sino complementarios.
El comparar moléculas de alto peso molecular sobre combinaciones de menor peso,
permitió entender de un posible efecto de saturación del medio, además del efecto redox.
El potencial de la coenzima Q10 y la menaquinona es significativos, siempre que se
considere dosis, diluyentes, donantes y ambiente.
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2274 Revista Multidisciplinar Epistemología de las Ciencias | Vol. 3, Núm. 1, 2026, enero-marzo
Declaración de conflicto de intereses
Los autores declaran no tener ningún conflicto de interés relacionado con esta
investigación.
Declaración de contribución a la autoría
Dayana Castro: investigación, redacción del borrador original, revisión y edición de la
redacción.
Manuel Maldonado: investigación, metodología.
Andrés Moscoso: conceptualización, administración del proyecto, recursos.
Declaración de uso de inteligencia artificial
Los autores declaran que utilizaron la inteligencia artificial como apoyo para este
artículo, y también que esta herramienta no sustituye de ninguna manera la tarea o proceso
intelectual. Después de rigurosas revisiones con diferentes herramientas en la que se
comprobó que no existe plagio como constan en las evidencias, los autores manifiestan y
reconocen que este trabajo fue producto de un trabajo intelectual propio, que no ha sido escrito
ni publicado en ninguna plataforma electrónica o de IA.
REFERENCIAS
Abecia, J. A., Carvajal-Serna, M., Casao, A., Palacios, C., Pulinas, L., Keller, M., Chemineau,
P., & Delgadillo, J. A. (2020). The continuous presence of ewes in estrus in spring
influences testicular volume, testicular echogenicity and testosterone concentration, but
not LH pulsatility in rams. Animal, 14(12), 2554–
2561. https://doi.org/10.1017/S1751731120001330
Adami, L., Maciel Júnior, V., & De Agostini Losano, J. (2022). Review on the role of antioxidant
supplementation against oxidative stress: A human and animal approach to male
DOI: https://doi.org/10.71112/c9qe0m86
2275 Revista Multidisciplinar Epistemología de las Ciencias | Vol. 3, Núm. 1, 2026, enero-marzo
fertility. Research, Society and Development, 11(1). https://doi.org/10.33448/rsd-
v11i1.25191
Aguirre-Riofrio, E. (2023). Estudio de la actividad reproductiva. Cedamaz, 13(2), 190–
194. https://doi.org/10.54753/cedamaz.v13i2.2035
Aitken, R. J., & Drevet, J. R. (2020). The importance of oxidative stress in determining the
functionality of mammalian spermatozoa: A two-edged sword. Antioxidants, 9(2),
111. https://doi.org/10.3390/antiox9020111
Bansal, A. K., & Bilaspuri, G. S. (2011). Impacts of oxidative stress and antioxidants on semen
functions. Veterinary Medicine International, 2011,
686137. https://doi.org/10.4061/2011/686137
Chavoshi Nezhad, N., Vahabzadeh, Z., Allahveisie, A., Rahmani, K., Raoofi, A., & Rezaie, M. J.
(2021). The effect of L-carnitine and coenzyme Q10 on sperm motility, DNA
fragmentation, chromatin structure and oxygen free radicals during, before and after
freezing in oligospermia men. Urology Journal, 18(3), 330–
336. https://doi.org/10.22037/uj.v16i7.6400
Cofré, E., Peralta, O. A., Raggi, A., De Los Reyes, M., Sales, F., González-Bulnes, A., &
Parraguez, V. H. (2018). Ram semen deterioration by short-term exposure to high
altitude is prevented by improvement of antioxidant status. Animal, 12(5), 1007–
1014. https://doi.org/10.1017/S1751731117002452
Farfán, K., Alvarado, J., & Moscoso, P. (2025). Determinación del efecto post congelación de
microdosis de menaquinona-4 en semen ovino. MQRInvestigar, 9(3), 1–
19. https://doi.org/10.56048/MQR20225.9.3.2025.e903
Gautier, C., & Aurich, C. (2022). Fine feathers make fine birds – The mammalian sperm plasma
membrane lipid composition and effects on assisted reproduction. Animal Reproduction
Science, 246. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2021.106884
DOI: https://doi.org/10.71112/c9qe0m86
2276 Revista Multidisciplinar Epistemología de las Ciencias | Vol. 3, Núm. 1, 2026, enero-marzo
Guamarrigra Sánchez, I. C., Alvarado Sáciense, J. C., Moscoso Piedra, A. L., & Maldonado
Cornejo, M. E. (2025). Evaluación del efecto combinado de coenzima Q10 y L-carnitina
sobre la crioconservación de semen ovino. ASCE, 4(3), 1793–
1811. https://doi.org/10.70577/ASCE/1793.1811/2025
Guiracocha-Viñanzaca, I. M., Moscoso-Piedra, A., & Alvarado-Alvarado, J. C. (2025). Efecto de
microdosis de coenzima Q10 en la refrigeración de semen ovino previo a la
congelación. MQRInvestigar, 9(1). https://doi.org/10.56048/MQR20225.9.1.2025.e114
Iliceto, M., Andersen, J., Haug, M., Haugen, T., & Witczack, O. (2024). Association of
endogenous seminal L-carnitine levels with post-thaw semen parameters in
humans. Andrology, 2024, 4327010. https://doi.org/10.1155/2024/4327010
Juliani, G., & Henry, M. (2008). Efeito do glicerol, etilenoglicol, acetamida e leite desnatado na
criopreservação de espermatozóides eqüinos. Arquivo Brasileiro de Medicina
Veterinária e Zootecnia, 60, 1103–1109.
Kowalczyk, A. (2022). The role of the natural antioxidant mechanism in sperm
cells. Reproductive Sciences, 29, 1387–1394. https://doi.org/10.1007/s43032-021-
00795-w
Larbi, A., Anass, B., Maia, M. D., Boubker, N., & Bouchra, E. (2018). Supplementation of ram
semen extender to improve seminal quality and fertility rate. Animal Reproduction
Science, 192, 6–17. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2018.03.019
Lema Guamán, M. F., Maldonado Cornejo, M. E., Alvarado Booker, J. C., & Moscoso Piedra, A.
L. (2025). Evaluación del efecto combinado de la menaquinona-4 y L-carnitina sobre la
crioconservación de semen ovino. ASCE Magazine, 4(3), 1906–1926.
Loja, E., Maldonado, M., Alvarado, J., & Moscoso, A. (2025). Efecto de la concentración de la
coenzima Q10 en semen ovino post congelación. Revista Espamciencia, 16(2), 30–36.
DOI: https://doi.org/10.71112/c9qe0m86
2277 Revista Multidisciplinar Epistemología de las Ciencias | Vol. 3, Núm. 1, 2026, enero-marzo
Mehdipour, M., Mohammadi, H., & Salih, S. (2025). Mitochondrial specific antioxidant MitoPBN
mitigates oxidative stress and improves mitochondrial function in cryopreserved ram
sperm. Scientific Reports. https://doi.org/10.1038/s41598-025-95820-2
Moreira, F. M., Martins, A., Oliveira, P., Alves, M., & Pereira, M. (2023). L-carnitine and male
fertility: Is supplementation beneficial? Journal of Clinical Medicine, 12(18),
5796. https://doi.org/10.3390/jcm12185796
Nogueira, B. G., Pereira, R. R., Bitencourt, J. L., Milan, B. R. W. V. A., Junior, M. V., et al.
(2022). Coenzyme Q10 and melatonin protect cryopreserved equine sperm against
lipoperoxidation. Animal Reproduction Science,
243. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2022.107027
Puerta, M., Henao-Salazar, L., Vélez, I., León, S., Rojano, B., Restrepo, G., & Úsuga, A. (2024).
Dietary antioxidant supplementation improves the in vitro quality and antioxidant capacity
of Colombian Creole stallion semen. Czech Journal of Animal Science, 69(11), 450–
461. https://doi.org/10.17221/98/2024-CJAS
Reyes-González, E. A., Centurión-Castro, F., Uc Espinosa, N., Ek-Mex, J. E., Peralta-Torres, J.
A., & Segura Correa, J. C. (2022). Effect of Ley-Leygo and Triladyl extenders and two
equilibration times on the freezing of boar semen. Revista de Investigaciones
Veterinarias del Perú, 33(6). https://doi.org/10.15381/rivep.v33i6.22758
Reza, M., Nader, A., & Mohsen, S. (2021). Effects of freezing extender supplementation with
mitochondria-targeted antioxidant Mito-TEMPO on frozen-thawed rooster semen quality
and reproductive performance. Animal Reproduction Science,
225. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2020.106671
Rodríguez, S. (2024). Evaluación de la calidad espermática de semen porcino criopreservado
en diferentes niveles de coenzima Q10 [Tesis de grado, Escuela Superior Politécnica de
Chimborazo]. http://dspace.espoch.edu.ec/handle/123456789/23037
DOI: https://doi.org/10.71112/c9qe0m86
2278 Revista Multidisciplinar Epistemología de las Ciencias | Vol. 3, Núm. 1, 2026, enero-marzo
Sadler, R., Shoveller, A., Shandilya, R., Charchoglyan, A., & Wagter-Lesperance, L. (2024).
Más allá de la cascada de la coagulación: La vitamina K y su impacto multifacético en la
salud humana y de los animales domésticos. Current Issues in Molecular Biology, 7001–
7031.
Uribe Valderrama, R., Arango Rodríguez, E., Rendón Álvarez, L., & Naranjo, M. A. (2011).
Evaluation of canine semen that has gone through a freezing and thawing process with
different glycerol concentrations as a cryoprotector. CES Medicina Veterinaria y
Zootecnia, 6(1).
Valdez-Pinargote, Moscoso-Piedra, A., & Maldonado-Cornejo, M. (2024). Efecto de la
concentración de la L-carnitina en congelación del semen ovino. Journal Scientific,
8(4). https://doi.org/10.56048/MQR20225.8.4.2024.7324-7341
Vicente-Fiel, S., Palacín, I., Santolaria, P., Fantova, E., Quintín-Casorrán, F. J., Sevilla-Mur, E.,
& Yániz, J. L. (2014). In vitro assessment of sperm quality from rams of high and low
field fertility. Animal Reproduction Science, 15–
20. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2014.02.005
Wang, W., Fang, H., Groom, L., Cheng, A., Zhang, W., Liu, J., & Cheng, H. (2008). Superoxide
flashes in single mitochondria. Cell, 134(2), 279–290.
Watson, P. F. (2000). The causes of reduced fertility with cryopreserved semen. Animal
Reproduction Science, 60–61, 481–492. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00099-3
